Laktosa. Gula susu. Sukrosa. Gula tebu. Mengurangi gula. Metode analisis zat pereduksi Mengapa gula pereduksi ditentukan?

Perkenalan

Gula. Mengurangi gula

Balikkan sirup

Mengurangi gula

bagian eksperimental

Melakukan analisis

1. Penentuan kandungan gula pereduksi pada selai jeruk

2. Penentuan kandungan gula pereduksi pada marshmallow

3.

kesimpulan

Bibliografi

Lampiran 1

Perkenalan

Iodometri adalah metode analisis volumetrik, di mana lebih baru dari mana letak reaksinya: + 2е → 2I ―

SAYA ― ―2e → I2

Metode iodimetri dapat digunakan untuk menentukan kedua oksida teli dan agen pereduksi.

Penentuan zat pengoksidasi. Metode iodimetri dapat digunakan untuk menentukan zat pengoksidasi yang secara kuantitatif mengoksidasi I ―untuk membebaskan I2. Paling sering, permanganat, bikromat, garam tembaga (II), dan garam jeli ditentukan untuk (III), halogen bebas, dan seterusnya. Indikator dalam metode iodimetri adalah larutan kanji. Ini adalah indie yang sensitif dan spesifik cator yang membentuk senyawa adsorpsi biru dengan yodium.

Definisi agen pereduksi. Dari nomor yang dipulihkan Metode ini paling sering menentukan sulfit, sulfida, timah(II) klorida, dll. Larutan yang berfungsi adalah larutan yodium I2. Metode iodimetri banyak digunakan dalam analisis kimia. Metode ini menentukan senyawa arsenik (III); tembaga (II) dalam garam, bijih; banyak obat organik - formaldehida, analgin, asam askorbat, dll.
Tujuan pekerjaan: penentuan gula pereduksi pada berbagai produk kembang gula.
Tugas:

Pengembangan teknik penentuan kuantitatif gula pereduksi dalam larutan kerja.

Untuk menetapkan kepatuhan terhadap kandungan normal gula pereduksi dalam produk kembang gula yang terkandung dalam Gost

Bahan baku utama pembuatan produk kembang gula adalah gula pasir, sirup invert, tepung terigu, lemak, dan susu. Selain itu, buah-buahan dan beri, kacang-kacangan, biji kakao, madu, rempah-rempah dan banyak produk lainnya digunakan dalam produksi produk kembang gula.

Dalam membentuk sifat konsumen produk kembang gula, peran besar diberikan pada produk yang memberi struktur, penampilan, rasa dan warna: bahan pembentuk gel, pengemulsi, bahan pembusa, pewarna, perasa.

gula-gula konsumen mengurangi gula

Gula. Mengurangi gula

Produknya adalah karbohidrat murni - sukrosa, ditandai dengan rasa manis yang menyenangkan dan daya cerna yang tinggi. Ini memiliki nilai fisiologis yang besar, memiliki efek merangsang pada sistem saraf pusat, berkontribusi terhadap eksaserbasi organ penglihatan dan pendengaran; merupakan nutrisi untuk materi abu-abu otak; berpartisipasi dalam pembentukan lemak, senyawa protein-karbohidrat dan glikogen. Konsumsi gula yang berlebihan menyebabkan obesitas, diabetes, dan karies. Norma hariannya adalah 100 g, per tahun - 36,5 kg, tetapi harus dibedakan tergantung usia dan gaya hidup.

Balikkan sirup

Sirup invert berfungsi sebagai pengganti molase karena memiliki sifat anti-kristalisasi. Sirup invert diperoleh dengan memanaskan larutan gula dan asam dalam air, di mana proses inversi terjadi, yang terdiri dari pemecahan sukrosa menjadi fruktosa dan glukosa. Asam yang digunakan untuk inversi adalah: klorida, sitrat, laktat, asetat.

Mengurangi gula

Semua monosakarida, dalam hal sirup glukosa dan fruktosa, dan beberapa disakarida, termasuk maltosa dan laktosa, termasuk dalam kelompok gula pereduksi (pereduksi), yaitu senyawa yang dapat masuk ke dalam reaksi reduksi.

Dua reaksi umum untuk gula pereduksi - reaksi Benedict dan reaksi Fehling - didasarkan pada kemampuan gula ini untuk mereduksi ion tembaga divalen menjadi monovalen. Kedua reaksi tersebut menggunakan larutan basa tembaga(II) sulfat (CuSO4), yang direduksi menjadi tembaga(I) oksida (Cu2O) yang tidak larut.

Reaksi Fehling paling sering digunakan untuk membuktikan sifat pereduksi gula; reaksi ini melibatkan reduksi tembaga (II) hidroksida menjadi tembaga (I) oksida oleh monosakarida. Saat melakukan reaksi, digunakan reagen Fehling, yaitu campuran tembaga sulfat dengan garam Rochelle (kalium, natrium tartrat) dalam media basa. Ketika tembaga sulfat dicampur dengan alkali, tembaga hidroksida terbentuk.

CuSO4 + 2NaOH -> Cu(OH)2↓ + Na2SO4

Dengan adanya garam Rochelle, hidroksida yang dilepaskan tidak mengendap, tetapi membentuk senyawa kompleks tembaga(II) yang dapat larut, yang tereduksi dengan adanya monosakarida membentuk tembaga(I) protoksida. Dalam hal ini, gugus aldehida atau keton dari monosakarida dioksidasi menjadi gugus karboksil. Misalnya reaksi glukosa dengan pereaksi Fehling.

CH2OH - (CHOH) 4 - ANAK + Cu(OH) 2 ===>

Pentingnya gula bagi tubuh

Fruktosa.

Fruktosa lebih sedikit jumlahnya dibandingkan glukosa dan juga cepat teroksidasi. Beberapa fruktosa diubah menjadi glukosa di hati, namun tidak memerlukan insulin untuk penyerapannya. Keadaan ini, serta penyerapan fruktosa yang jauh lebih lambat dibandingkan glukosa di usus, menjelaskan toleransi yang lebih baik pada pasien diabetes.

Glukosa adalah unit penyusun semua polisakarida terpenting - glikogen, pati, selulosa. Ini adalah bagian dari sukrosa, laktosa, maltosa. Glukosa dengan cepat diserap ke dalam darah dari saluran pencernaan, kemudian memasuki sel-sel organ, di mana ia terlibat dalam proses oksidasi biologis. Metabolisme glukosa disertai dengan pembentukan sejumlah besar asam adenosin trifosfat (ATP), yang merupakan sumber jenis energi unik. ATP berperan sebagai baterai universal dan pembawa energi di semua organisme hidup. Dalam pengobatan, sediaan adenosin digunakan untuk kejang pembuluh darah dan distrofi otot, dan ini membuktikan pentingnya ATP dan glukosa bagi tubuh.

Saat tubuh terjaga, energi glukosa mengisi kembali hampir setengah dari biaya energinya. Sisa glukosa yang tidak diambil diubah menjadi glikogen, polisakarida yang disimpan di hati.

Metode penentuan gula dalam produk kembang gula

Karena pemantauan kadar gula dalam tubuh diperlukan, ada sejumlah metode berbeda untuk menentukan jumlah gula total dan gula pereduksi (terbalik) dalam produk kembang gula,
yang merupakan bagian penting dari pengendalian kualitas untuk produksi produk ini.
metode iodimetri

Metode ini didasarkan pada reduksi larutan basa tembaga dengan sejumlah larutan gula pereduksi dan penentuan jumlah oksida tembaga (1) tembaga yang terbentuk atau tidak tereduksi dengan menggunakan metode iodometri.

Cara tersebut digunakan untuk semua jenis produk kembang gula dan produk setengah jadi, kecuali produk kembang gula tepung, produk setengah jadi untuk kue dan kue kering serta manisan oriental.

Metode ini digunakan ketika timbul perbedaan pendapat dalam penilaian kualitas.

Metode permanganat

Metode ini didasarkan pada reduksi garam besi (III) dengan tembaga (I) oksida dan titrasi selanjutnya reduksi oksida besi (I) tereduksi dengan permanganat.

Metode polarimetrik

Metode ini didasarkan pada pengukuran rotasi bidang polarisasi cahaya dengan lensa optik aktif. makhluk.

Metode tersebut digunakan untuk menentukan fraksi massa gula total pada coklat, praline, minuman kakao, olesan coklat, manisan batangan, produk setengah jadi coklat tanpa bahan tambahan dan dengan tambahan susu.

bagian eksperimental

Pembuatan dan standarisasi larutan C(Na2S2O3) = 0,1 mol/dm3

Reagen:

Berat Na2S2O3 ×5 jam 2O

Contoh K2Cr2O7

larutan M HCl

% larutan pati

Air sulingan

Labu takar 100cm3;

Silinder ukur dengan kapasitas 25 cm3;

Labu titrasi berbentuk kerucut 250 cm3

buret 25 ml

Kemajuan:

Larutan kerja natrium tiosulfat dibuat dengan cara menimbang, berdasarkan konsentrasi larutan tertentu dan volumenya. Untuk menyiapkan 200 ml larutan natrium tiosulfat 0,1 m, timbang 5 g natrium tiosulfat dalam botol timbang pada skala teknis. Sampel yang diambil dilarutkan dalam 200 ml air suling dan ditambahkan 0,02 g soda. Solusinya disimpan dalam botol kaca gelap.

Penentuan konsentrasi tepat larutan natrium tiosulfat dilakukan dengan menggunakan 2-3 porsi kalium dikromat yang tepat menggunakan metode semi mikro (buret 25 ml, pembagian 0,1 ml). Berat kalium dikromat dihitung dengan mempertimbangkan volume labu takar, pipet, buret dan konsentrasi larutan natrium tiosulfat yang disiapkan. Mengingat titrasi aliquot larutan kalium dikromat harus menggunakan 10 ml natrium tio sulfat 0,1 M serta perbandingan labu takar dan pipet

: 10, hitung massa kalium dikromat: (K2Cr2O7) = C(Na2S2O3) × V(Na2S2O3) × M(1/6 K2Cr2O7) × 100/10 = 0,1× 10 49× 10 = 490 mg = 0,49 gram.

Berat pasti kalium dikromat berada pada kisaran 0,47-0,51 g.Tabung reaksi yang berisi kalium dikromat ditimbang dengan timbangan analitik, dikromat dituangkan melalui corong ke dalam labu ukur 100 ml dan tabung reaksi yang berisi kalium dikromat ditimbang. ditimbang. Berdasarkan perbedaan penimbangan, ditemukan sebagian kalium dikromat. Dengan menggunakan air suling, cuci kalium dikromat dari corong ke dalam labu, kocok isi labu hingga kalium dikromat benar-benar larut

dan baru setelah itu tambahkan air sampai tanda batas. Solusinya tercampur dengan baik. Pipet 10 ml dicuci dengan larutan kalium dikromat

dan ambil 1/10 bagiannya ke dalam labu titrasi 250 ml, tambahkan 5 ml larutan KI 10% dan 5 ml larutan HCl 2 M. Labu ditutup dengan kaca arloji dan dibiarkan selama 5 menit di tempat gelap. Kemudian tambahkan 50 ml air ke dalam larutan dan titrasi dengan larutan natrium tiosulfat, tambahkan setetes demi setetes dan aduk larutan hingga rata. Bila warna larutan berubah dari coklat menjadi kuning pucat, tambahkan 50 tetes larutan kanji

(2-3 ml) dan lanjutkan titrasi sampai warna biru larutan berubah menjadi hijau pucat, hampir tidak berwarna. Pada titrasi kedua dan selanjutnya, pati ditambahkan sedekat mungkin dengan akhir titrasi. Volume larutan natrium tiosulfat diukur dengan ketelitian ±0,005 ml. Titrasi alikuot larutan kalium dikromat dilakukan 3-4 kali dan dihitung nilai rata-rata volume natrium tiosulfat (Vavg), deviasi relatif dari rata-rata tidak lebih dari 0,5%. Berdasarkan data percobaan, titer natrium tiosulfat dihitung dari kalium dikromat.

Bagian perhitungan

V1=9, 6 ml=10, 3 ml=9, 8 mlr=9,9 ml

M(1/6 K2Cr2O7)=49 g/mol

M(Na2S2O3 × 5H2O)=248 g/mol(Na2S2O3)=158,11 g/ml(K2Cr2O7)= C(Na2S2O3) × V(Na2S2O3) × M(1/6 K2Cr2O7) × 100/10=0,1 ×10 ×49 ×10=490 mg = 0,49 gram

T (Na2S2O3/ K2Cr2O7) = , g/ml(Na2S2O3) = , mol/l(Na2S2O3) = , g/ml(Na2S2O3/ K2Cr2O7) = = =0,005050 g/ml(Na2S2O3)= = =0,1030 mol/ l(Na2S2O3) = = 0,01629 gram/ml

Pembuatan larutan tembaga alkali sitrat (reagen Benedict)

Reagen:×5H20

Asam sitrat C6H8O7CO3

Air sulingan

Peralatan

Labu takar 250 cm3

Gelas kimia

Kemajuan.

77 g tembaga sulfat dilarutkan dalam 25 cm3 dist. air.

5 g asam sitrat dilarutkan secara terpisah dalam 13 cm3 larutan. air.

9 g natrium karbonat anhidrat juga dilarutkan secara terpisah dalam 125 cm3 air panas. air.

Larutan asam sitrat dituangkan dengan hati-hati ke dalam larutan natrium karbonat. Setelah pelepasan karbon dioksida berhenti, campuran larutan dipindahkan ke labu takar berkapasitas 250 cm3, larutan tembaga sulfat dituangkan ke dalam labu dan isi labu ditepatkan hingga ditimbang. air sampai tanda batas, aduk

Selama percobaan, gugus aldehida teroksidasi, dan kation tembaga tereduksi. Reagen Benedict cenderung membentuk oksida terhidrasi, sehingga produk reaksi tidak selalu berwarna merah: bisa juga berwarna kuning atau hijau. Jika kadar gulanya rendah, maka endapan hanya terbentuk setelah pendinginan. Jika tidak ada gula pereduksi maka larutan tetap jernih. Larutan dengan kadar gula 0,08% memberikan hasil positif yang nyata, sedangkan untuk pereaksi Fehling nilainya 0,12%.

Persiapan larutan uji kerja.

Produk uji yang dihaluskan diambil sebagian ditimbang sehingga jumlah gula pereduksi dalam 1 cm3 larutan sekitar 0,005 g

Berat sampel dihitung dengan menggunakan rumus

m= b×V×100/P

dimana b adalah konsentrasi gula pereduksi optimal g/cm3 kapasitas labu ukur, cm3 adalah fraksi massa gula pereduksi yang diharapkan dalam produk yang diteliti, %

Menurut GOST 6442-89 Marmalade tidak boleh mengandung lebih dari 20% gula pereduksi berdasarkan berat produk.

Menurut GOST 6441-96 Produk kembang gula pastille dapat mengandung 10% hingga 25% gula pereduksi berdasarkan berat produk.

Menurut GOST 6477-88, karamel tidak boleh mengandung lebih dari 20% gula pereduksi berdasarkan berat produk.

Sampel dalam gelas dilarutkan dalam air suling yang dipanaskan hingga 60˚-70˚С

Jika produk larut tanpa residu, maka larutan yang dihasilkan didinginkan dan dipindahkan ke dalam labu takar 250 cm3, ditepatkan sampai tanda dengan air yang sama dan diaduk rata.

Apabila produk mengandung zat yang tidak larut dalam air, maka setelah sampel dipindahkan ke dalam labu takar, dimasukkan ke dalam penangas air selama 10-15 menit, kemudian disaring, didinginkan dan disesuaikan dengan air suling hingga tanda.

Melakukan analisis

25 cm3 larutan alkali tembaga sitrat, 10 cm3 larutan uji, dan 15 cm3 air suling dipipet ke dalam labu berbentuk kerucut yang berkapasitas 250 cm3. Labu dihubungkan ke lemari es refluks dan dididihkan selama 3-4 menit dan direbus selama 10 menit.Selama perebusan, kami mengamati reaksi kualitatif glukosa dengan tembaga hidroksida: karena glukosa mengandung lima gugus hidroksil dan satu gugus aldehida, maka glukosa mengandung lima gugus hidroksil dan satu gugus aldehida. diklasifikasikan sebagai alkohol aldehida. Sifat kimianya mirip dengan alkohol polihidrat dan aldehida. Reaksi dengan tembaga(II) hidroksida menunjukkan sifat pereduksi glukosa. Tambahkan beberapa tetes larutan Benedict ke dalam larutan glukosa. Tidak ada endapan tembaga hidroksida yang terbentuk. Solusinya berubah menjadi biru cerah. Dalam hal ini, glukosa melarutkan tembaga (II) hidroksida dan berperilaku seperti alkohol polihidrat. Mari kita panaskan solusinya. Warna larutan mulai berubah. Pertama, terbentuk endapan Cu2O berwarna kuning, yang seiring waktu membentuk kristal Cu2O berwarna merah yang lebih besar. Glukosa dioksidasi menjadi asam glukonat.

CH2OH - (CHOH) 4 - SON + Cu(OH) 2 ===> CH2OH - (CHOH) 4 - COOH + Cu2O↓+ H2O

Labu didinginkan dengan cepat hingga suhu kamar.

Tambahkan 10 cm3 larutan KI 30% dan 25 cm3 larutan H2SO4 dengan konsentrasi 4 mol/dm3 ke dalam cairan yang didinginkan. Asam sulfat dituangkan dengan hati-hati agar tidak terciprat keluar dari labu karena pelepasan karbon dioksida. Setelah itu, yodium yang dilepaskan segera dititrasi dengan larutan natrium tiosulfat hingga cairan berubah menjadi kuning muda.

Kemudian tambahkan 2-3 cm3 larutan kanji 1% dan lanjutkan titrasi cairan kotor berwarna biru hingga muncul warna putih susu. Catat jumlah tiosulfat yang digunakan untuk titrasi. Percobaan diulang sebanyak 3 kali.

Percobaan kontrol dilakukan pada kondisi yang sama, dimana diambil 25 cm3 larutan alkali tembaga sitrat dan 25 cm3 air suling.

Perbedaan antara volume natrium tiosulfat dalam cm3 yang digunakan dalam percobaan kontrol dan penentuan, dikalikan dengan faktor koreksi K = 1,2, menghasilkan jumlah tembaga yang dinyatakan dalam cm3 larutan natrium tiosulfat 0,1 mol/dm3, dari mana jumlahnya miligram gula invers ditemukan dalam 10 cm3 larutan sampel produk uji menurut Tabel 1, disediakan dalam GOST 5903-89

Fraksi massa gula pereduksi (X) sebagai persentase dihitung dengan menggunakan rumus

Dimana m adalah sampel produk, g adalah massa gula terbalik yang ditentukan dari Tabel 1, mg adalah kapasitas labu ukur, cm3 adalah volume larutan uji yang diambil untuk analisis, cm3

Pembahasan hasil penelitian

Penentuan kandungan gula pereduksi pada selai jeruk.

Titrasi 123 Volume, ml 1716.616 Nilai rata-rata, ml 16.5 Volume natrium tiosulfat pada percobaan kontrol adalah 31 cm3isk1 = (31-17)1,21= 16,9 cm3isk2 = (31-16,6)1,21= 17,4 cm3isk3 = (31-16)1,21= 18,2 cm3inv1 = 46,14 mg (sesuai ketentuan tabel pada Lampiran 1) inv2 = 47,34 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) inv3 = 49,74 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) = 6, 25 g = 250 cm3 = 10 cm3

ω1 = = = 18,5%

ω2 = = = 18,9%

ω3 = = = 19,9%

ωrata-rata = 19,1%

Penentuan kandungan gula pereduksi pada marshmallow.

Volume natrium tiosulfat yang digunakan untuk titrasi

Titrasi 123 Volume 17.817.717.5 Nilai rata-rata, ml 17,7 isk1 = (31-17.8)1.21= 16 cm3isk2 = (31-17.7)1.21= 16.1 cm3isk3 = (31-17.5)1.21= 16.3 cm3inv1 =43,53 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) inv2 = 43.82 mg ( sesuai tabel pada Lampiran 1) inv3 = 44,11 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) = 5,25 g =250cm3=10cm3

ωrata-rata = 20,86%

Penentuan kandungan gula pereduksi pada karamel

Volume natrium tiosulfat yang digunakan untuk titrasi

Titrasi 123 Volume 18.318.518,1 Nilai rata-rata, ml 18,3 isk1 = (31-18.3)1.21= 15.4 cm3isk2 = (31-18.5)1.21= 15.1 cm3isk3 = (31-18.1)1.21= 15.6 cm3inv1 = 41.79 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) inv2 = 40.92 mg (dalam sesuai tabel pada Lampiran 1) inv3 = 42,37 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) = 5,25 g = 250 cm3=10 cm3

ωrata-rata = 19,9%

Objek Penelitian Isi yang ditetapkan ed. gula, % Kandungan normal ed. gula menurut Gost,% Marmalade 19.1 Tidak lebih dari 20 Pastille 20.86 Dari 10 hingga 25 Karamel 19.9 Tidak lebih dari 20

kesimpulan

Dari hasil penelitian, fraksi massa gula pereduksi pada berbagai jenis produk kembang gula dapat ditentukan dengan menggunakan metode titrasi iodometri. Berdasarkan hasil, kandungan gula pereduksi pada semua produk yang dianalisis sesuai dengan standar negara, sehingga dapat disetujui untuk dijual.

Bibliografi

Gost 6477-88 Karamel. Kondisi teknis umum.

Gost 6441-96 Produk kembang gula pastille.

GOST 6442-89 selai jeruk. Kondisi teknis.

V.P. Kimia Analitik Vasiliev - M.: Bustard 2004

Skoog D., West D. Dasar-dasar kimia analitik. - M.: Mir, 1979.Vol.1,2.

Dasar-dasar Kimia Analitik / Ed. Akademisi Yu.A.Zolotov. - M.: Sekolah Tinggi, 2002. Buku. 12.

Alekseev V.I.Analisis kuantitatif. - M.: Kimia, 1972.

Kembang gula [Sumber daya elektronik]: #"justify">Penganan [Sumber daya elektronik]: #"justify">Lampiran 1

Penemuan ini berkaitan dengan penentuan zat pereduksi dan dapat digunakan dalam produksi kembang gula, karamel dan gula. Caranya meliputi oksidasi zat pereduksi dengan senyawa tembaga (II) dalam media basa bila dipanaskan dalam penangas air mendidih selama 10 menit, sehingga volume larutan yang didinginkan sampai nilai tertentu, menentukan kerapatan optik pada panjang gelombang 670 nm, memperkenalkan koreksi untuk oksidasi parsial karbohidrat non-pereduksi, yang mengurangi pembacaan kepadatan optik, dan memperkirakan konsentrasi zat pereduksi sesuai dengan grafik kalibrasi. Peningkatan akurasi dan reproduktifitas analisis tercapai. 5 pr., 6 tab., 4 sakit.

Penemuan ini berkaitan dengan metode untuk menentukan zat pereduksi dan dapat digunakan dalam produksi kembang gula, karamel dan gula.

Kandungan zat pereduksi dalam karamel diatur secara ketat dan tidak lebih dari 20% untuk karamel yang tidak diasamkan, tidak lebih dari 23% untuk karamel dengan penambahan asam lebih dari 0,6% dan tidak lebih dari 32% untuk produk dengan laktosa [GOST 6477-88 Karamel. Kondisi teknis umum.]. Gula pereduksi yang berlebihan dapat menyebabkan penyerapan uap air dari udara dan membasahi produk. Kurangnya zat pereduksi menyebabkan kristalisasi sukrosa di dalam produk, yang mempengaruhi kualitasnya selama penyimpanan jangka panjang.

Jumlah zat pereduksi digunakan untuk menilai derajat hidrolisis pati dalam produksi sirup gula; indikator inilah yang terutama menentukan jenis produk: untuk molase rendah gula kandungan zat pereduksi adalah 26-35%, untuk karamel asam dan karamel enzimatik - 36-44%, untuk maltosa - 38 % atau lebih, untuk gula tinggi - 45% atau lebih [GOST R 52060-2003 Sirup pati. Kondisi teknis umum].

Ada metode yang diketahui berdasarkan penentuan kandungan zat pereduksi, berdasarkan penentuan titrimetri oksida tembaga (I), yang dilepaskan sebagai hasil reduksi tembaga divalen dengan zat pereduksi. Kerugian utama dari metode ini adalah subjektivitas dalam menentukan akhir titrasi, serta perlunya titrasi substitusi, yang meningkatkan intensitas tenaga kerja metode ini dan juga secara signifikan mempengaruhi kesalahan pengukuran [GOST 5903-89. Produk kembang gula. Metode penentuan gula. - Hlm.131-141].

Analog dari penemuan ini adalah metode fotokolorimetri yang didasarkan pada penghilangan warna larutan kalium heksasianoferat (ferricyanide) (III) selama reaksi dengan zat pereduksi. Jumlah zat pereduksi ditentukan oleh residu ferisianida setelah reaksi. Residu ferricyanide ditentukan oleh kepadatan optik dalam kuvet dengan ketebalan lapisan 10 mm dan dengan filter cahaya yang memiliki panjang gelombang 440 nm relatif terhadap sampel kosong [GOST 5903-89. Produk kembang gula. Metode penentuan gula. - Hlm.144-147].

Kerugian dari metode ini meliputi:

1) penggunaan kalium ferricyanide untuk oksidasi zat pereduksi, yang dibandingkan dengan larutan Fehling, secara signifikan mengoksidasi sukrosa;

2) ketika larutan direbus, ia terkonsentrasi karena penguapan air yang intensif, mengakibatkan peningkatan kerapatan optik, menyebabkan kesalahan non-sistematis dalam percobaan paralel (tidak mungkin mencapai laju pemanasan, intensitas perebusan, dan pendinginan yang sama kecepatan);

3) grafik kalibrasi tidak mematuhi hukum Bouguer-Lambert-Beer, oleh karena itu metode ini tidak dapat menjamin hasil yang dapat diandalkan - Gambar 1.

Analog terdekat (prototipe) adalah metode yang didasarkan pada fotokolorimetri larutan tembaga-basa (larutan Fehling) setelah bereaksi dengan zat pereduksi. Larutan tembaga sulfat, larutan basa garam Rochelle, larutan garam darah kuning dan larutan uji ditambahkan ke dalam tabung reaksi. Selanjutnya tabung reaksi dipanaskan dalam penangas air mendidih selama 3 menit, setelah itu campuran difotometer pada fotokolorimeter pada 670 nm relatif terhadap air suling dalam kuvet dengan ketebalan lapisan kerja 1 cm. dilakukan tanpa pemanasan. Kandungan zat pereduksi ditentukan dengan menggunakan persamaan kurva kalibrasi.

Kerugian dari metode ini adalah:

1) ketika larutan disimpan dalam penangas air mendidih, konsentrasinya berubah karena penguapan air yang intensif, yang mengakibatkan peningkatan kerapatan optik, menyebabkan kesalahan pengukuran yang tidak sistematis;

2) kurangnya koreksi untuk oksidasi parsial karbohidrat non-pereduksi (misalnya sukrosa) dengan reagen Fehling - Gambar 2, yang sangat perlu diperhitungkan ketika menganalisis produk kembang gula;

3) waktu penahanan yang tidak mencukupi dalam penangas air mendidih - 3 menit: selama waktu ini, zat pereduksi tidak memiliki waktu untuk bereaksi sepenuhnya, terjadi perubahan kepadatan optik, yang juga menyebabkan kesalahan dalam penentuan - Gambar 3.

Hasil teknis dari metode yang diusulkan adalah untuk meningkatkan akurasi dan reproduktifitas analisis.

Hasil teknis dicapai dengan oksidasi zat pereduksi oleh senyawa tembaga (II) dalam media basa ketika dipanaskan dalam penangas air mendidih selama 10 menit, membawa volume larutan yang didinginkan ke nilai tertentu, menentukan kerapatan optik pada a panjang gelombang 670 nm, memperkenalkan koreksi untuk oksidasi parsial karbohidrat non-pereduksi, yang dikurangi dari pembacaan kepadatan optik, dan penilaian konsentrasi zat pereduksi sesuai dengan grafik kalibrasi.

Inti dari metode yang diusulkan adalah sebagai berikut.

Reagen: larutan I: 34,66 g CuSO 4 ·5H 2 O dalam 1 liter larutan; larutan II: 70 g NaOH, 173 g garam Rochelle (kalium natrium tartrat) dan 4 g garam darah kuning dalam 1 liter. Larutan II dapat dibuat tanpa garam darah kuning, dalam hal ini diperlukan filtrasi atau sentrifugasi sebelum membaca densitas optik larutan uji.

Teknik eksperimental

Pipet 5 ml larutan I dan II serta larutan uji menjadi 10 ml (larutan standar gula reduksi) ke dalam labu takar 25 ml, inkubasi selama 10 menit dalam penangas air mendidih, dinginkan hingga suhu kamar dan encerkan dengan air suling sampai tanda. , campur (sentrifugasi /filter) dan lakukan pembacaan kerapatan optik pada 670 nm relatif terhadap sampel kosong (5 ml larutan I dan II, volume dibawa ke 25 ml), menggunakan kuvet selebar 10 mm. Nilai kerapatan optik diambil modulo.

Jika larutan uji mengandung karbohidrat non-pereduksi, misalnya sukrosa (dapat dihitung secara kondisional sebagai selisih antara total gula dan zat pereduksi) dalam jumlah yang banyak, maka dilakukan perubahan sesuai tabel.

Koreksi karbohidrat non pereduksi saat menentukan kandungan zat pereduksi

Persentase zat pereduksi dalam produk ditentukan dengan rumus:

dimana M adalah massa sampel produk, g; V adalah volume labu takar tempat sampel dilarutkan, ml; ν - volume larutan yang diambil untuk analisis, ml.

1 g karamel (sampel 1) dilarutkan dalam labu takar 100 ml. Reagen dan larutan uji ditambahkan ke dalam labu ukur 25 ml: 4, 6 dan 8 ml, yang setara dengan 40, 60 dan 80 mg produk. Dengan asumsi kadar air karamel 3% dan kandungan karbohidrat non pereduksi 80% bahan kering, maka perlu dilakukan perubahan sesuai tabel. pada pembacaan kepadatan optik pada kasus ke-2 sebesar 0,005 dan pada kasus ke-3 sebesar 0,010.

Hasilnya dirangkum dalam sebuah tabel.

1 g karamel (sampel 2) dilarutkan dalam labu takar 100 ml. Selanjutnya seperti Contoh 1.

1 g karamel, dibuat di laboratorium dengan merebus sirup gula dengan molase 1:1 hingga suhu 140°C, dilarutkan dalam labu takar 100 ml. Reagen dan larutan uji ditambahkan ke dalam labu ukur 25 ml: 2, 4, 6, 8 dan 10 ml, yang setara dengan 20, 40, 60, 80 dan 100 mg produk. Untuk definisi 3 kami menerima amandemen sebesar 0,005, untuk definisi 4 - 0,010, untuk definisi 5 - 0,020.

1 g molase dilarutkan dalam labu takar 100 ml. Reagen dan larutan uji ditambahkan ke dalam labu ukur 25 ml: 2, 4, 5 dan 6 ml, yang setara dengan 20, 40, 50 dan 60 mg produk. Jika kadar air molase menjadi 22% dan kandungan karbohidrat non-pereduksi menjadi 70% bahan kering, maka tidak perlu dilakukan perubahan dalam hal apapun (60 * 0,78 * 0,7<40).

Analisis roti untuk total gula. Setelah hidrolisis asam dan netralisasi ekstrak air 6 g roti, larutan disesuaikan hingga 100 ml. Reagen dan larutan uji ditambahkan ke dalam labu ukur 25 ml: 2, 4, 6 dan 8 ml, yang setara dengan 120, 240, 360 dan 480 mg produk. Tidak perlu melakukan amandemen.

Metode yang diusulkan dicirikan oleh reproduktifitas dan akurasi yang sangat tinggi dibandingkan dengan metode analog.

Suatu cara untuk menganalisis zat pereduksi dalam media yang mengandung gula, termasuk oksidasi zat pereduksi dengan senyawa tembaga (II) dalam media basa bila dipanaskan dalam penangas air mendidih selama 10 menit, sehingga volume larutan yang didinginkan mencapai nilai tertentu. , menentukan kerapatan optik pada panjang gelombang 670 nm, memperkenalkan koreksi oksidasi parsial karbohidrat non-pereduksi, yang dikurangi dari pembacaan kerapatan optik, dan penilaian konsentrasi zat pereduksi sesuai dengan grafik kalibrasi.

Daftar isi topik "Air. Karbohidrat. Lipid.":

Laktosa, atau gula susu, hanya ditemukan dalam susu dan berfungsi sebagai sumber energi penting bagi mamalia muda. Ini dicerna secara perlahan dan oleh karena itu mampu memberikan aliran energi yang konstan dan stabil.

Sukrosa, atau gula tebu- polisakarida paling umum di alam. Paling sering ditemukan pada tumbuhan, di mana ia diangkut dalam jumlah besar melalui floem. Sukrosa sangat cocok untuk tujuan ini karena, karena kelarutannya yang tinggi, sukrosa dapat diangkut dalam bentuk larutan yang sangat pekat.

Secara kimia mengenai sukrosa cukup inert, yaitu ketika berpindah dari satu tempat ke tempat lain, praktis tidak terlibat dalam metabolisme. Untuk alasan yang sama, sukrosa terkadang disimpan sebagai nutrisi cadangan. Secara industri, sukrosa diperoleh dari tebu atau bit gula; “Gula” inilah yang biasa kita beli di toko.

Mengurangi gula

Semua monosakarida dan beberapa disakarida, termasuk maltosa dan laktosa, termasuk dalam kelompok pereduksi.

Sakharov, yaitu senyawa yang mampu mengalami reaksi reduksi. Ini adalah satu-satunya gula non-pereduksi di antara gula-gula biasa. Dua reaksi umum terhadap gula pereduksi adalah: Reaksi Benediktus Dan Reaksi Fehling- didasarkan pada kemampuan Gula ini untuk mereduksi ion tembaga divalen menjadi monovalen. Kedua reaksi tersebut menggunakan larutan basa tembaga(II) sulfat (CuSO4), yang direduksi menjadi tembaga(II) oksida (Cu20) yang tidak larut.

Tolong beri tahu saya apa itu gula pereduksi dan gula apa yang termasuk di dalamnya? dan mendapat jawaban terbaik

Jawaban dari Sveta Panchenko[guru]
Istilah “gula pereduksi” mengacu pada sekelompok gula yang, dalam reaksi kimia, mempunyai efek pereduksi pada reagen terkait. Rasio kuantitatif glukosa dan fruktosa bergantung pada jenis suap, jumlah enzim yang disekresikan oleh lebah, dan lama penyimpanan. Pada madu yang belum mengalami perlakuan panas, enzim tidak kehilangan aktivitasnya, dan molekul gula baru terbentuk selama penyimpanan. Kerja enzim yang berkepanjangan pada komponen gula madu, bersama dengan fenomena lainnya, menyebabkan “stratifikasi” madu. Glukosa yang mengkristal mengendap, dan fruktosa cair terkumpul di atasnya. Tabel berikut mencantumkan karbohidrat yang terdapat dalam madu.
semua informasi lainnya ada di sini:
dan di sini:
tautan
Mengurangi gula
Semua monosakarida dan beberapa disakarida, termasuk maltosa dan laktosa, termasuk dalam kelompok pereduksi (pereduksi).
Gula, yaitu senyawa yang mampu mengalami reaksi reduksi. Sukrosa adalah satu-satunya gula non-pereduksi di antara gula-gula biasa. Dua reaksi umum terhadap gula pereduksi - reaksi Benedict dan reaksi Fehling - didasarkan pada kemampuan gula ini untuk mereduksi ion tembaga divalen menjadi monovalen. Kedua reaksi tersebut menggunakan larutan basa tembaga(II) sulfat (CuSO4), yang direduksi menjadi tembaga(II) oksida (Cu20) yang tidak larut.

Jawaban dari 2 jawaban[guru]

Halo! Berikut pilihan topik beserta jawaban atas pertanyaan Anda: Tolong beri tahu saya apa itu gula pereduksi dan gula apa yang termasuk di dalamnya?

Jawaban dari NATALIE[guru]
Istilah “gula pereduksi” mengacu pada sekelompok gula yang, dalam reaksi kimia, mempunyai efek pereduksi pada reagen terkait. Fruktosa, glukosa, sukrosa.

Perkenalan

Gula. Mengurangi gula

Balikkan sirup

Mengurangi gula

Pentingnya gula bagi tubuh

Metode penentuan gula dalam produk kembang gula

bagian eksperimental

Pembuatan larutan tembaga alkali sitrat (reagen Benedict)

Melakukan analisis

Pembahasan hasil penelitian

1. Penentuan kandungan gula pereduksi pada selai jeruk

2. Penentuan kandungan gula pereduksi pada marshmallow

3. Penentuan kandungan gula pereduksi pada karamel

kesimpulan

Bibliografi

Lampiran 1

Perkenalan

Iodometri adalah metode analisis volumetrik, di mana yang lebih baru dari reaksi manakah: + 2e? 2Saya?

SAYA? ?2 ya? I2

Metode iodimetri dapat digunakan untuk menentukan kedua oksida teli dan agen pereduksi.

Penentuan zat pengoksidasi. Metode iodimetri dapat digunakan untuk menentukan zat pengoksidasi yang secara kuantitatif mengoksidasi I ?untuk membebaskan I2. Paling sering, permanganat, bikromat, garam tembaga (II), dan garam jeli ditentukan untuk (III), halogen bebas, dan seterusnya. Indikator dalam metode iodimetri adalah larutan kanji. Ini adalah indie yang sensitif dan spesifik cator yang membentuk senyawa adsorpsi biru dengan yodium.

Definisi agen pereduksi. Dari nomor yang dipulihkan Metode ini paling sering menentukan sulfit, sulfida, timah(II) klorida, dll. Larutan yang berfungsi adalah larutan yodium I2. Metode iodimetri banyak digunakan dalam analisis kimia. Metode ini menentukan senyawa arsenik (III); tembaga (II) dalam garam, bijih; banyak obat organik - formaldehida, analgin, asam askorbat, dll.
Tujuan pekerjaan: penentuan gula pereduksi pada berbagai produk kembang gula. Tugas:

Pengembangan teknik penentuan kuantitatif gula pereduksi dalam larutan kerja.

Untuk menetapkan kepatuhan terhadap kandungan normal gula pereduksi dalam produk kembang gula yang terkandung dalam Gost

Bahan baku utama pembuatan produk kembang gula adalah gula pasir, sirup invert, tepung terigu, lemak, dan susu. Selain itu, buah-buahan dan beri, kacang-kacangan, biji kakao, madu, rempah-rempah dan banyak produk lainnya digunakan dalam produksi produk kembang gula.

Dalam membentuk sifat konsumen produk kembang gula, peran besar diberikan pada produk yang memberi struktur, penampilan, rasa dan warna: bahan pembentuk gel, pengemulsi, bahan pembusa, pewarna, perasa.

gula-gula konsumen mengurangi gula

Gula. Mengurangi gula

Produknya adalah karbohidrat murni - sukrosa, ditandai dengan rasa manis yang menyenangkan dan daya cerna yang tinggi. Ini memiliki nilai fisiologis yang besar, memiliki efek merangsang pada sistem saraf pusat, berkontribusi terhadap eksaserbasi organ penglihatan dan pendengaran; merupakan nutrisi untuk materi abu-abu otak; berpartisipasi dalam pembentukan lemak, senyawa protein-karbohidrat dan glikogen. Konsumsi gula yang berlebihan menyebabkan obesitas, diabetes, dan karies. Norma hariannya adalah 100 g, per tahun - 36,5 kg, tetapi harus dibedakan tergantung usia dan gaya hidup.

Balikkan sirup

Sirup invert berfungsi sebagai pengganti molase karena memiliki sifat anti-kristalisasi. Sirup invert diperoleh dengan memanaskan larutan gula dan asam dalam air, di mana proses inversi terjadi, yang terdiri dari pemecahan sukrosa menjadi fruktosa dan glukosa. Asam yang digunakan untuk inversi adalah: klorida, sitrat, laktat, asetat.

Mengurangi gula

Semua monosakarida, dalam hal sirup glukosa dan fruktosa, dan beberapa disakarida, termasuk maltosa dan laktosa, termasuk dalam kelompok gula pereduksi (pereduksi), yaitu senyawa yang dapat masuk ke dalam reaksi reduksi.

Dua reaksi umum untuk gula pereduksi - reaksi Benedict dan reaksi Fehling - didasarkan pada kemampuan gula ini untuk mereduksi ion tembaga divalen menjadi monovalen. Kedua reaksi tersebut menggunakan larutan basa tembaga(II) sulfat (CuSO4), yang direduksi menjadi tembaga(I) oksida (Cu2O) yang tidak larut.

Reaksi Fehling paling sering digunakan untuk membuktikan sifat pereduksi gula; reaksi ini melibatkan reduksi tembaga (II) hidroksida menjadi tembaga (I) oksida oleh monosakarida. Saat melakukan reaksi, digunakan reagen Fehling, yaitu campuran tembaga sulfat dengan garam Rochelle (kalium, natrium tartrat) dalam media basa. Ketika tembaga sulfat dicampur dengan alkali, tembaga hidroksida terbentuk.

CuSO4 + 2NaOH -> Cu(OH)2? + Na2SO4

Dengan adanya garam Rochelle, hidroksida yang dilepaskan tidak mengendap, tetapi membentuk senyawa kompleks tembaga(II) yang dapat larut, yang tereduksi dengan adanya monosakarida membentuk tembaga(I) protoksida. Dalam hal ini, gugus aldehida atau keton dari monosakarida dioksidasi menjadi gugus karboksil. Misalnya reaksi glukosa dengan pereaksi Fehling.

CH2OH - (CHOH) 4 - ANAK + Cu(OH) 2 ===>

Pentingnya gula bagi tubuh

Fruktosa.

Fruktosa lebih sedikit jumlahnya dibandingkan glukosa dan juga cepat teroksidasi. Beberapa fruktosa diubah menjadi glukosa di hati, namun tidak memerlukan insulin untuk penyerapannya. Keadaan ini, serta penyerapan fruktosa yang jauh lebih lambat dibandingkan glukosa di usus, menjelaskan toleransi yang lebih baik pada pasien diabetes.

Glukosa adalah unit penyusun semua polisakarida terpenting - glikogen, pati, selulosa. Ini adalah bagian dari sukrosa, laktosa, maltosa. Glukosa dengan cepat diserap ke dalam darah dari saluran pencernaan, kemudian memasuki sel-sel organ, di mana ia terlibat dalam proses oksidasi biologis. Metabolisme glukosa disertai dengan pembentukan sejumlah besar asam adenosin trifosfat (ATP), yang merupakan sumber jenis energi unik. ATP berperan sebagai baterai universal dan pembawa energi di semua organisme hidup. Dalam pengobatan, sediaan adenosin digunakan untuk kejang pembuluh darah dan distrofi otot, dan ini membuktikan pentingnya ATP dan glukosa bagi tubuh.

Saat tubuh terjaga, energi glukosa mengisi kembali hampir setengah dari biaya energinya. Sisa glukosa yang tidak diambil diubah menjadi glikogen, polisakarida yang disimpan di hati.

Metode penentuan gula dalam produk kembang gula

Karena pemantauan kadar gula dalam tubuh diperlukan, ada sejumlah metode berbeda untuk menentukan jumlah gula total dan gula pereduksi (terbalik) dalam produk kembang gula,
yang merupakan bagian penting dari pengendalian kualitas untuk produksi produk ini. metode iodimetri

Metode ini didasarkan pada reduksi larutan basa tembaga dengan sejumlah larutan gula pereduksi dan penentuan jumlah oksida tembaga (1) tembaga yang terbentuk atau tidak tereduksi dengan menggunakan metode iodometri.

Cara tersebut digunakan untuk semua jenis produk kembang gula dan produk setengah jadi, kecuali produk kembang gula tepung, produk setengah jadi untuk kue dan kue kering serta manisan oriental.

Metode ini digunakan ketika timbul perbedaan pendapat dalam penilaian kualitas.

Metode permanganat

Metode ini didasarkan pada reduksi garam besi (III) dengan tembaga (I) oksida dan titrasi selanjutnya reduksi oksida besi (I) tereduksi dengan permanganat.

Metode polarimetrik

Metode ini didasarkan pada pengukuran rotasi bidang polarisasi cahaya oleh zat aktif optik.

Metode tersebut digunakan untuk menentukan fraksi massa gula total pada coklat, praline, minuman kakao, olesan coklat, manisan batangan, produk setengah jadi coklat tanpa bahan tambahan dan dengan tambahan susu.

bagian eksperimental

Pembuatan dan standarisasi larutan C(Na2S2O3) = 0,1 mol/dm3

Reagen:

Berat Na2S2O3×5H 2O

Contoh K2Cr2O7

larutan M HCl

% larutan pati

Air sulingan

Labu takar 100cm3;

Silinder ukur dengan kapasitas 25 cm3;

Labu titrasi berbentuk kerucut 250 cm3

Pipet 10 ml

buret 25 ml

Kemajuan:

Larutan kerja natrium tiosulfat dibuat dengan cara menimbang, berdasarkan konsentrasi larutan tertentu dan volumenya. Untuk menyiapkan 200 ml larutan natrium tiosulfat 0,1 m, timbang 5 g natrium tiosulfat dalam botol timbang pada skala teknis. Sampel yang diambil dilarutkan dalam 200 ml air suling dan ditambahkan 0,02 g soda. Solusinya disimpan dalam botol kaca gelap.

Penentuan konsentrasi tepat larutan natrium tiosulfat dilakukan dengan menggunakan 2-3 porsi kalium dikromat yang tepat menggunakan metode semi mikro (buret 25 ml, pembagian 0,1 ml). Berat kalium dikromat dihitung dengan mempertimbangkan volume labu takar, pipet, buret dan konsentrasi larutan natrium tiosulfat yang disiapkan. Mengingat titrasi aliquot larutan kalium dikromat harus menggunakan 10 ml natrium tio sulfat 0,1 M serta perbandingan labu takar dan pipet

: 10, hitung massa kalium dikromat: (K2Cr2O7) = C(Na2S2O3) × V(Na2S2O3) × M(1/6 K2Cr2O7) × 100/10 = 0,1× 10 49×10 = 490 mg = 0,49 gram.

Berat pasti kalium dikromat berada pada kisaran 0,47-0,51 g.Tabung reaksi yang berisi kalium dikromat ditimbang dengan timbangan analitik, dikromat dituangkan melalui corong ke dalam labu ukur 100 ml dan tabung reaksi yang berisi kalium dikromat ditimbang. ditimbang. Berdasarkan perbedaan penimbangan, ditemukan sebagian kalium dikromat. Dengan menggunakan air suling, cuci kalium dikromat dari corong ke dalam labu, kocok isi labu hingga kalium dikromat benar-benar larut

dan baru setelah itu tambahkan air sampai tanda batas. Solusinya tercampur dengan baik. Pipet 10 ml dicuci dengan larutan kalium dikromat

dan ambil 1/10 bagiannya ke dalam labu titrasi 250 ml, tambahkan 5 ml larutan KI 10% dan 5 ml larutan HCl 2 M. Labu ditutup dengan kaca arloji dan dibiarkan selama 5 menit di tempat gelap. Kemudian tambahkan 50 ml air ke dalam larutan dan titrasi dengan larutan natrium tiosulfat, tambahkan setetes demi setetes dan aduk larutan hingga rata. Bila warna larutan berubah dari coklat menjadi kuning pucat, tambahkan 50 tetes larutan kanji

(2-3 ml) dan lanjutkan titrasi sampai warna biru larutan berubah menjadi hijau pucat, hampir tidak berwarna. Pada titrasi kedua dan selanjutnya, pati ditambahkan sedekat mungkin dengan akhir titrasi. Volume larutan natrium tiosulfat diukur dengan ketelitian ±0,005 ml. Titrasi alikuot larutan kalium dikromat dilakukan 3-4 kali dan dihitung nilai rata-rata volume natrium tiosulfat (Vavg), deviasi relatif dari rata-rata tidak lebih dari 0,5%. Berdasarkan data percobaan, titer natrium tiosulfat dihitung dari kalium dikromat.

Bagian perhitungan

V1=9, 6 ml=10, 3 ml=9, 8 mlr=9,9 ml

M(1/6 K2Cr2O7)=49 g/mol

M(Na2S2O3 × 5H2O)=248 g/mol(Na2S2O3)=158,11 g/ml(K2Cr2O7)= C(Na2S2O3) × V(Na2S2O3) × M(1/6 K2Cr2O7) × 100/10=0,1 ×10 ×49 ×10=490 mg =0,49 g

T (Na2S2O3/ K2Cr2O7) = , g/ml(Na2S2O3) = , mol/l(Na2S2O3) = , g/ml(Na2S2O3/ K2Cr2O7) = = =0,005050 g/ml(Na2S2O3)= = =0,1030 mol/ l(Na2S2O3) = = 0,01629 gram/ml

Pembuatan larutan tembaga alkali sitrat (reagen Benedict)

Reagen:×5H20

Asam sitrat C6H8O7CO3

Air sulingan

Peralatan

Labu takar 250 cm3

Gelas kimia

Kemajuan.

77 g tembaga sulfat dilarutkan dalam 25 cm3 dist. air.

5 g asam sitrat dilarutkan secara terpisah dalam 13 cm3 larutan. air.

9 g natrium karbonat anhidrat juga dilarutkan secara terpisah dalam 125 cm3 air panas. air.

Larutan asam sitrat dituangkan dengan hati-hati ke dalam larutan natrium karbonat. Setelah pelepasan karbon dioksida berhenti, campuran larutan dipindahkan ke labu takar berkapasitas 250 cm3, larutan tembaga sulfat dituangkan ke dalam labu dan isi labu ditepatkan hingga ditimbang. air sampai tanda batas, aduk

Selama percobaan, gugus aldehida teroksidasi, dan kation tembaga tereduksi. Reagen Benedict cenderung membentuk oksida terhidrasi, sehingga produk reaksi tidak selalu berwarna merah: bisa juga berwarna kuning atau hijau. Jika kadar gulanya rendah, maka endapan hanya terbentuk setelah pendinginan. Jika tidak ada gula pereduksi maka larutan tetap jernih. Larutan dengan kadar gula 0,08% memberikan hasil positif yang nyata, sedangkan untuk pereaksi Fehling nilainya 0,12%.

Persiapan larutan uji kerja.

Produk uji yang dihaluskan diambil sebagian ditimbang sehingga jumlah gula pereduksi dalam 1 cm3 larutan sekitar 0,005 g

Berat sampel dihitung dengan menggunakan rumus

dimana b adalah konsentrasi gula pereduksi optimal g/cm3 kapasitas labu ukur, cm3 adalah fraksi massa gula pereduksi yang diharapkan dalam produk yang diteliti, %

Menurut GOST 6442-89 Marmalade tidak boleh mengandung lebih dari 20% gula pereduksi berdasarkan berat produk.

Menurut GOST 6441-96 Produk kembang gula pastille dapat mengandung 10% hingga 25% gula pereduksi berdasarkan berat produk.

Menurut GOST 6477-88, karamel tidak boleh mengandung lebih dari 20% gula pereduksi berdasarkan berat produk.

Sampel dalam gelas dilarutkan dalam air suling yang dipanaskan hingga 60?-70?C

Jika produk larut tanpa residu, maka larutan yang dihasilkan didinginkan dan dipindahkan ke dalam labu takar 250 cm3, ditepatkan sampai tanda dengan air yang sama dan diaduk rata.

Apabila produk mengandung zat yang tidak larut dalam air, maka setelah sampel dipindahkan ke dalam labu takar, dimasukkan ke dalam penangas air selama 10-15 menit, kemudian disaring, didinginkan dan disesuaikan dengan air suling hingga tanda.

Melakukan analisis

25 cm3 larutan alkali tembaga sitrat, 10 cm3 larutan uji, dan 15 cm3 air suling dipipet ke dalam labu berbentuk kerucut yang berkapasitas 250 cm3. Labu dihubungkan ke lemari es refluks dan dididihkan selama 3-4 menit dan direbus selama 10 menit.Selama perebusan, kami mengamati reaksi kualitatif glukosa dengan tembaga hidroksida: karena glukosa mengandung lima gugus hidroksil dan satu gugus aldehida, maka glukosa mengandung lima gugus hidroksil dan satu gugus aldehida. diklasifikasikan sebagai alkohol aldehida. Sifat kimianya mirip dengan alkohol polihidrat dan aldehida. Reaksi dengan tembaga(II) hidroksida menunjukkan sifat pereduksi glukosa. Tambahkan beberapa tetes larutan Benedict ke dalam larutan glukosa. Tidak ada endapan tembaga hidroksida yang terbentuk. Solusinya berubah menjadi biru cerah. Dalam hal ini, glukosa melarutkan tembaga (II) hidroksida dan berperilaku seperti alkohol polihidrat. Mari kita panaskan solusinya. Warna larutan mulai berubah. Pertama, terbentuk endapan Cu2O berwarna kuning, yang seiring waktu membentuk kristal Cu2O berwarna merah yang lebih besar. Glukosa dioksidasi menjadi asam glukonat.

CH2OH - (CHOH) 4 - SON + Cu(OH) 2 ===> CH2OH - (CHOH) 4 - COOH + Cu2O?+ H2O

Labu didinginkan dengan cepat hingga suhu kamar.

Tambahkan 10 cm3 larutan KI 30% dan 25 cm3 larutan H2SO4 dengan konsentrasi 4 mol/dm3 ke dalam cairan yang didinginkan. Asam sulfat dituangkan dengan hati-hati agar tidak terciprat keluar dari labu karena pelepasan karbon dioksida. Setelah itu, yodium yang dilepaskan segera dititrasi dengan larutan natrium tiosulfat hingga cairan berubah menjadi kuning muda.

Kemudian tambahkan 2-3 cm3 larutan kanji 1% dan lanjutkan titrasi cairan kotor berwarna biru hingga muncul warna putih susu. Catat jumlah tiosulfat yang digunakan untuk titrasi. Percobaan diulang sebanyak 3 kali.

Percobaan kontrol dilakukan pada kondisi yang sama, dimana diambil 25 cm3 larutan alkali tembaga sitrat dan 25 cm3 air suling.

Perbedaan antara volume natrium tiosulfat dalam cm3 yang digunakan dalam percobaan kontrol dan penentuan, dikalikan dengan faktor koreksi K = 1,2, menghasilkan jumlah tembaga yang dinyatakan dalam cm3 larutan natrium tiosulfat 0,1 mol/dm3, dari mana jumlahnya miligram gula invers ditemukan dalam 10 cm3 larutan sampel produk uji menurut Tabel 1, disediakan dalam GOST 5903-89

Fraksi massa gula pereduksi (X) sebagai persentase dihitung dengan menggunakan rumus

Dimana m adalah sampel produk, g adalah massa gula terbalik yang ditentukan dari Tabel 1, mg adalah kapasitas labu ukur, cm3 adalah volume larutan uji yang diambil untuk analisis, cm3

Pembahasan hasil penelitian

Penentuan kandungan gula pereduksi pada selai jeruk.

Titrasi 123 Volume, ml 1716.616 Nilai rata-rata, ml 16.5 Volume natrium tiosulfat pada percobaan kontrol adalah 31 cm3isk1 = (31-17)1,21= 16,9 cm3isk2 = (31-16,6)1,21= 17,4 cm3isk3 = (31-16)1,21= 18,2 cm3inv1 = 46,14 mg (sesuai ketentuan tabel pada Lampiran 1) inv2 = 47,34 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) inv3 = 49,74 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) = 6, 25 g = 250 cm3 = 10 cm3

Rata-rata = 19,1%

Penentuan kandungan gula pereduksi pada marshmallow.

Volume natrium tiosulfat yang digunakan untuk titrasi

Titrasi 123 Volume 17.817.717.5 Nilai rata-rata, ml 17,7 isk1 = (31-17.8)1.21= 16 cm3isk2 = (31-17.7)1.21= 16.1 cm3isk3 = (31-17.5)1.21= 16.3 cm3inv1 =43,53 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) inv2 = 43.82 mg ( sesuai tabel pada Lampiran 1) inv3 = 44,11 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) = 5,25 g = 250 cm3 = 10 cm3

Rata-rata = 20,86%

Penentuan kandungan gula pereduksi pada karamel

Volume natrium tiosulfat yang digunakan untuk titrasi

Titrasi 123 Volume 18.318.518,1 Nilai rata-rata, ml 18,3 isk1 = (31-18.3)1.21= 15.4 cm3isk2 = (31-18.5)1.21= 15.1 cm3isk3 = (31-18.1)1.21= 15.6 cm3inv1 = 41.79 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) inv2 = 40.92 mg (dalam sesuai tabel pada Lampiran 1) inv3 = 42,37 mg (sesuai tabel pada Lampiran 1) = 5,25 g = 250 cm3=10 cm3

Rata-rata = 19,9%

Objek Penelitian Isi yang ditetapkan ed. gula, % Kandungan normal ed. gula menurut Gost,% Marmalade 19.1 Tidak lebih dari 20 Pastille 20.86 Dari 10 hingga 25 Karamel 19.9 Tidak lebih dari 20

Dari hasil penelitian, fraksi massa gula pereduksi pada berbagai jenis produk kembang gula dapat ditentukan dengan menggunakan metode titrasi iodometri. Berdasarkan hasil, kandungan gula pereduksi pada semua produk yang dianalisis sesuai dengan standar negara, sehingga dapat disetujui untuk dijual.

Bibliografi

Gost 6477-88 Karamel. Kondisi teknis umum.

Gost 6441-96 Produk kembang gula pastille.

GOST 6442-89 selai jeruk. Kondisi teknis.

V.P. Kimia Analitik Vasiliev - M.: Bustard 2004

Skoog D., West D. Dasar-dasar kimia analitik. - M.: Mir, 1979.Vol.1,2.

Dasar-dasar Kimia Analitik / Ed. Akademisi Yu.A.Zolotov. - M.: Sekolah Tinggi, 2002. Buku. 12.

Alekseev V.I.Analisis kuantitatif. - M.: Kimia, 1972.

Kembang gula [Sumber daya elektronik]: #"justify">Penganan [Sumber daya elektronik]: #"justify">Lampiran 1

bimbingan belajar

Butuh bantuan mempelajari suatu topik?

Spesialis kami akan memberi saran atau memberikan layanan bimbingan belajar tentang topik yang Anda minati.
Kirimkan lamaran Anda menunjukkan topik saat ini untuk mengetahui kemungkinan mendapatkan konsultasi.

Facebook

Twitter

Dalam kontak dengan

Teman sekelas

Google+